準備碎冰和。把膜置于甲醇溶液中活化1分鐘，然后轉移至轉膜液中平衡3分鐘后備用。2、轉膜組裝轉膜三明治夾，這一步很關鍵，重要的是膠和膜之間不能有氣泡且膜與膠要保證貼合緊密(否則會翻車)，可以加多點轉膜液泡著。組裝好后加滿轉膜液，設置電源參數，我習慣恒流轉膜，200-280毫安，1-2小時，根據分子量定，如50KD的分子用60分鐘就夠了。如果一個電源帶兩個轉膜大槽即四塊膠，我就會用恒壓70-110V。這個過程重要的是做好降溫。這里簡單說一下蛋白分子量與玻璃板厚度，分離膠的濃度，轉膜電源參數的選擇問題。如果是能用1毫米的玻璃板就不用，因為轉膜是在電場的作用下蛋白分子從膠上遷移到膜上，1毫米膠的蛋白遷移距離要比。選擇更薄的膠蛋白轉膜時間可以減少，從而減少發熱，以免膠變形，條帶也會更好看。然后是分離膠的濃度，如果是150—200KD的分子選10%以下的的分離膠，200—300KD的選8%的,300KD以上的選6%的，小于30KD的200mA30分鐘，30-100KD的按分子量的數值算，如70KD，250mA70分鐘;100-150KD的250mA100分鐘;150—300KD的分子轉膜條件用280毫安(以上均是對于，)，120分鐘足矣，前提是膠的濃度相適應。五、封閉孵一抗1、封閉轉膜結束后。它主要影響身體內的大中動脈，如冠狀動脈、頸動脈、腦動脈和腎動脈等，其發病機制的主要過程。腦定位動物模型服務

SD大鼠腦缺血致腦梗死模型【材料】水合氯醛、線栓直徑（體重250-300g）【方法】1、10％水合氯醛（35mg/kg）腹腔注射麻醉。2、仰臥位固定，頸正中線切口，分離肌肉和筋膜，分離左側頸總動脈（CCA）、頸外動脈（ECA）和頸內動脈（ICA）。3、微動脈夾暫時夾閉頸內動脈（ICA），活扣結扎近心端頸總動脈（CCA）、頸外動脈（ECA）打雙結，在雙結中間剪開小口插入線栓。4、將拴線插入到頸內動脈（ICA），用眼科鑷輕推拴線，以頸外動脈（ECA）和頸內動脈（ICA）分叉處為參考位置。5、栓線插入預刻深度，感到有阻力，說明栓線已到達腦中動脈（MCA）,打結固定栓線。6、血管外的栓線不要留得過長，1h后拔出栓線，縫合傷口，單籠飼養觀察。注：前兩三天老鼠會萎靡，不進食，注意不要，老鼠無死亡即可。湖北外包動物模型手術上面是我們已構建成功的動物模型，我們還可以根據客戶實驗方案構建其它模型，具體要求請咨詢。

經多級乙醇至水洗：二甲苯(i)5min→二甲苯(ⅱ)5min→100％乙醇2min→95％的乙醇1min→80％乙醇1min→75％乙醇1min→蒸餾水洗2min；4)蘇木素染色5分鐘，自來水沖洗；5)鹽酸乙醇分化30秒；6)自來水浸泡15分鐘；7)置伊紅液2分鐘。8)常規脫水，透明，封片：95％乙醇(i)1min→95％乙醇(ⅱ)1min→100％乙醇(i)1min→100％乙醇(ⅱ)1min→二甲苯石碳酸(3：1)1min→二甲苯(i)1min→二甲苯(ⅱ)1min→中性樹脂封固。9)顯微鏡下拍照。結果發現在4個月時，與ctrl(對照)小鼠比較，sixko小鼠的視網膜外核層已經開始變薄，表明感光細胞死亡(圖7)。實施例5視網膜冰凍切片免疫染色：取4月齡的由實施例2得到的gm20541基因敲除純合子小鼠斷頸處死后，快速取眼球，并放入4％的pfa中，冰上固定15min后，在角膜上剪口，然后繼續冰上固定。2h后，pbs緩沖液沖洗3遍，然后將眼球置于30％蔗糖溶液中脫水2h，然后解剖鏡下剪去角膜及晶體，oct包埋并迅速置于-80℃冰箱冷凍。大約10min后，取出oct包埋的眼球，置于冰凍切片機-25℃平衡約30min后即可切片。切片厚度為12μm。切片完成后，選取質量較高的片子于37℃烘箱放置30min，然后免疫組化筆在有視網膜組織的地方畫圈，pbs洗三遍以去除oct。

實驗樣本分類實驗一般采取樣本有：血液樣本、組織樣本和細胞樣本。通常，組織樣本采集后，應立即用等滲溶液（PBS或生理鹽水）盡量把血液漂洗干凈（除非血液也是分析對象），用濾紙或紗布吸干，把樣本分切成幾分，每份的體積約2個黃豆大小，每份用一個管子裝。血液樣本的采集應根據不同實驗的要求，將會采取不同策略。血清樣本：全血中不加抗凝劑，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黃色透明液體。（全血標本室溫放置2小時3000rpm/min離心15min）血漿樣本：全血中加抗凝劑，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黃色透明液體。（可用EDTA或肝素作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內于2-8℃，3000rpm/min離心15min）如果是做生化\ELISA等檢測可以考慮血漿和血清，根據獲得的樣本量可考慮分裝成100-500μl/管，可避免反復凍融造成的檢測誤差。生化：建議優先選擇血清，其次選擇肝素抗凝血漿；ELISA：建議優先選擇血清，其次選擇肝素或EDTA抗凝血漿；凝血實驗：只能選擇枸櫞酸鈉抗凝血漿；血常規：只能選擇EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白細胞、血小板等建議用抗凝全血。如果要做流式建議用專門的流式用血液收集管，防止表面抗原的丟失，或者盡快安排就近檢測。樣本處理取樣完后。建立SD大鼠頸動脈損傷（結扎套管）模型。

然后再入固定液，但要注意防止組織損傷。要熟悉采集部位。要能準確的按解剖部位采集，如胰腺，一般取胰島較多的胰腺尾部；肺應取有細支氣管及帶有軟骨片的小支氣管部。如果實驗需進行多組織樣本的采集，采集順序應按照：消化，神經系統，皮膚，肌肉等的順序進行。選好組織塊的切面。熟悉某些組織成分安排，然后決定其切面的走向；如一長管狀以橫切面較好。切除不需要的部分。特別是組織周圍的脂肪等，應盡可能掉，否則給固定、脫水、浸蠟、切片等帶來一些不必要的問題。組織樣品的固定（1）固定的方法：①小塊組織固定法：從動物取下的小塊組織，立即置入液態固定劑（這是應用經常的方法）。②注射/灌注固定法：某些組織塊由于體積過大或固定液極難滲入內部或需要對整個臟器或整個動物進行固定，這時宜采用注射固定法，將固定液注入血管，經血管分支到達整個組織和全身，從而得到充分的固定。另，空腔組織比如肺，肺內含有空氣，固定液難以滲入，建議先做肺灌注，使得肺充盈滿固定液以后再進行保存，如果空腔中氣體沒有有效排出，后續可能影響固定效果（沒有灌注的肺組織會浮在液體表面不利于固定，切片以后也會看到很多的空泡）。③蒸汽固定法：比較細小而薄的標本。可以嚴格控制實驗條件，增強實驗材料的可比性。湖北小鼠動物模型構建

C57BL/6成年鼠肺部通過呼吸機過量通氣損傷模型的建立；腦定位動物模型服務

動物疾病模型在科研中有著普遍的應用。首先，它們可以幫助科研人員深入理解疾病的共同性，即不同物種之間存在的共有病理變化過程。通過對動物模型的研究，科研人員可以更清楚地了解疾病的發展過程和機制，為人類疾病的檢查提供理論依據。其次，動物疾病模型還為新藥研發和疫苗測試提供了有效的平臺。在藥物研發過程中，科研人員可以通過對動物模型進行藥物處理，觀察其療效和副作用，為新藥的臨床試驗提供依據。而在疫苗測試中，動物模型則可以用來評估疫苗的有效性和安全性。此外，動物疾病模型還為科研人員提供了研究人類疾病的跨學科方法。例如，通過比較人類和動物模型的基因組學、蛋白質組學等數據，可以發現與疾病發生相關的關鍵基因和蛋白質，從而為疾病的預防和檢查提供新的思路。雖然動物疾病模型在科研中發揮了巨大的作用，但也存在一些挑戰。首先，由于物種差異的存在，動物模型的表現與人類疾病可能存在差異，因此需要謹慎使用。此外，動物模型的倫理問題也不容忽視，科研人員需要在符合倫理規定的前提下進行相關研究。盡管存在挑戰，動物疾病模型的發展前景仍然值得期待。隨著科技的不斷進步，科研人員將能夠開發出更為精確、實用的動物模型。腦定位動物模型服務